Floresta e Ambiente
https://floram.org/article/doi/10.1590/2179-8087.117017
Floresta e Ambiente
Original Article Silviculture

Sucrose and substrates on the acclimatization of micropropagated Luehea divaricata plants

Karol Buuron da Silva; Lia Rejane Silveira Reiniger; Charlene Moro Stefanel; Silvia Machado dos Santos Rabaiolli

Downloads: 0
Views: 91

Abstract

Abstract: The objective of this study was to evaluate the effect of sucrose and substrates on the acclimatization of micropropagated Luehea divaricata plants. First, the effect of sucrose on in vitro growth and development of nodal segments in Woody Plant Medium reduced to its half concentration was tested. After that, these shoots were then acclimatized and the combined effect of sucrose, as previously described, plus the commercial substrates vermiculite, MecPlant® or H-decker® were tested. In the in vitro culture, root and leaf formation were superior (44%, 8.44 leaves) with 20 g L-1 sucrose, and then the presence of sucrose continued to be more efficient in the acclimatization with the MecPlant® or H-decker® commercial substrates. Sucrose at 20 g L-1 is more efficient for in vitro leaf and root formation, and the MecPlant® or H-decker® substrates may be used in acclimatization.

Keywords

micropropagation, forest species, carbohydrate

References

Bandeira FS, Xavier A, Otoni WC, Lani ERG. Aclimatização ex vitro de plantas propagadas pela enxertia in vitro de clones de Eucalyptus urophylla × E. grandis. Revista Árvore 2007; 31(5): 773-781. 10.1590/S0100-67622007000500001

Carvalho DC, Silva ALL, Schuck MR, Purcino M, Tanno GN, Biasi LA. Fox grape cv. Bordô (Vitis labrusca L.) and grapevine cv. Chardonnay (Vitis vinifera L.) cultivated in vitro under different carbohydrates, amino acids and 6-Benzylaminopurine levels. Brazilian Archives of Biology and Technology 2013; 56(2): 191-201. 10.1590/S1516-89132013000200004

Carvalho PER. Espécies arbóreas brasileiras. Brasília, DF: Embrapa; 2003.

Curti AR, Reiniger LRS. Formação in vitro de raízes em canafístula: o efeito de diferentes meios de cultivo. Ciência Rural 2014; 44(2): 314-320. 10.1590/S0103-84782014000200019

Fermino PCP Jr, Raposo A, Scherwinski-Pereira JE. Enraizamento ex vitro e aclimatização de plantas micropropagadas de Tectona grandis. Floresta 2011; 41(1): 79-86. 10.5380/rf.v41i1.21184

Fermino PCP Jr, Scherwinski-Pereira JE. Germinação e propagação in vitro de cerejeira (Amburana acreana (Ducke) A.C. Smith - Fabaceae). Ciência Florestal 2012; 22(1): 1-9. 10.5902/198050985074

Fernandes DA, Souza RS, Costa RB. Cultivo in vitro de teca (Tectona grandis L.f.): uma revisão. Revista de Agricultura 2011; 86(1): 32-46.

Ferreira DF. Sisvar: a guide for its bootstrap procedures in multiple comparisons. Ciência e Agrotecnologia 2014; 38(2): 109-112. 10.1590/S1413-70542014000200001

Galdiano RF Jr, Mantovani C, Cassano AO, Lemos EGM. Desenvolvimento inicial e crescimento in vitro de Cattleya violacea (Kunth) Rolfe em diferentes concentrações de sacarose. Acta Amazonica 2013; 43(2): 127-134. 10.1590/S0044-59672013000200001

Girardi CG, Pescador R. Aclimatação de gengibre (Zingiber officinale Roscoe) e a relação com carboidratos endógenos. Revista Brasileira Plantas Medicinais 2010; 12(1): 62-72. 10.1590/S1516-05722010000100010

Grattapaglia D, Machado MA. Micropropagação. In: Torres AC, Caldas LS, Buso JA. Cultura de tecidos e transformação genética de plantas. Brasília, DF: Embrapa; 1998. v. 1. p. 183-260.

Hoffmann A, Pasqual M, Chalfun NNJ, Vieira SSN. Substratos na indução e desenvolvimento in vitro de raízes em dois porta-enxertos de macieira. Pesquisa Agropecuária Brasileira 2001; 36(11): 1371-1379. 10.1590/S0100-204X2001001100007

Kozai T. Micropropagation under photoautotrophic conditions. In: Debergh P, Zimmerman RH, editors. Micropropagation technology and application. Dordrecht: Springer; 1991. p. 447-469.

Lemes CSR, Sorgato JC, Soares JS, Rosa YBCJ. Meios de cultivo e sacarose no crescimento inicial in vitro de Miltonia flavescens. Ciência Rural 2016; 46(3): 499-505. 10.1590/0103-8478cr20150368

Lloyd G, McCown B. Commercially feasible micropropagation of mountain laurel, Kalmia latifolia, by use of shoot tip culture. Combined Proceedings International Plant Propagators’ Society 1980; 30: 421-427.

Lorenzi H. Árvores brasileiras: manual de identificação e cultivo de plantas arbóreas nativas do Brasil. Nova Odessa: Plantarum; 2008. v. 1.

Maldaner J, Nicoloso FT, Santos ES, Fagundes CK, Flores R, Jucoski GO et al. Crescimento de plântulas de Pfaffia glomerata (Spreng.) Pedersen cultivadas in vitro sob dois níveis de nitrogênio e sacarose, durante seis subculturas sucessivas e aclimatização. Ciência Rural 2007; 37(1): 133-140. 10.1590/S0103-84782007000100021

Murashige T, Skoog F. A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum 1962; 15(3): 473-497. 10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x

Oliveira LS, Dias PC, Brondani GE. Micropropagação de espécies florestais brasileiras. Pesquisa Florestal Brasileira 2013; 33(76): 439-453.

Oliveira Y, Pinto F, Silva ALL, Guedes I, Biasi LA, Quoirin M. An efficient protocol for micropropagation of Melaleuca alternifolia Cheel. In Vitro Cellular and Developmental Biology: Plant 2010; 46(2): 192-197. 10.1007/s11627-010-9287-6

Pimentel-Gomes F. Curso de estatística experimental. 15th ed. Piracicaba: FEALQ; 2009.

Schuch M, Damiani CR. Diferentes substratos e ambientes no enraizamento in vitro de mirtilo. Ciência Rural 2009; 39(2): 563-566. 10.1590/S0103-84782009000200040

Souza AV, Pereira AMS. Enraizamento de plantas cultivadas in vitro. Revista Brasileira de Plantas Medicinais 2007; 9(4): 103-117.

Taiz L, Zeiger E, Møller IM, Murphy A. Fisiologia vegetal. 3rd ed. Porto Alegre: Artmed; 2004.

Vasconcelos JM, Leão JRA, Raposo A, Fermino PCP Jr. Sistemas de cultivo in vitro e aclimatização de Aechmea setigera Mart. ex Schult. & Schult. f. (Bromeliaceae). Scientia Agraria Paranaensis 2015; 14(4): 240-246. 10.18188/1983-1471/sap.v14n4p240-246

Vieira RL, Leite GB, Wamser AF. Efeito de substratos porosos no enraizamento in vitro do porta-enxerto de macieira M-9 (Malus pumilla). Revista Brasileira de Fruticultura 2007; 29(1): 128-132. 10.1590/S0100-29452007000100028

Xavier A, Wendling I, Silva RL. Silvicultura clonal: princípios e técnicas. Viçosa: Editora UFV; 2009.
 

5e85de150e8825a261a14d48 floram Articles
Links & Downloads

FLORAM

Share this page
Page Sections